Любушкина Ирина Викторовна, кандидат биологических наук, научный сотрудник, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, Россия, 664033, г. Иркутск, ул. Лермонтова, 132, доцент, Иркутский государственный университет Россия, 664003, г. Иркутск, ул. К. Маркса, 1, e-mail:ostrov1873@yandex.ru

Поморцев Анатолий Владимирович, кандидат биологических наук, научный сотрудник, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, Россия, 664033, г. Иркутск, ул. Лермонтова, 132, e-mail: pomorcevanatolii@mail.ru

Полякова Марина Станиславовна, ведущий инженер, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, Россия, 664033, г. Иркутск,ул. Лермонтова, 132, e-mail: poljakova.m@gmail.com

Арбузова Галина Андреевна, ведущий инженер, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, Россия, 664033, г. Иркутск, ул. Лермонтова, 132, магистрант, Иркутский государственный университет Россия, 664003, г. Иркутск, ул. К. Маркса, 1, e-mail: mingronland@mail.ru

Уколова Ирина Владимировна, кандидат биологических наук, старший научный сотрудник Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, Россия, 664033, г. Иркутск, ул. Лермонтова, 132, e-mail: irina@sifibr.irk.ru

Войников Виктор Кириллович, доктор биологических наук, профессор, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, Россия, 664033, г. Иркутск, ул. Лермонтова, 132, e-mail: vvk@sifibr.irk.ru

Анапияев Бахытжан Бейсенбекович, доктор биологических наук, Казахский национальный исследовательский технический университет им. К. И. Сатпаева 050013, Казахстан, г. Алматы, ул. Сатпаева, 22а, e-mail: bak_anapiyayev@mail.ru

Анапияев Б. Б. Культура микроспор и гаплоидная биотехнология пшеницы. Алматы, 2001. 220 с.

Влияние инициальных сред и длительности холодовой предобработки на эффективность андрогенеза в культуре изолированных пыльников озимой пшеницы сорта Иркутская / И. В. Любушкина, А. В. Поморцев, М. С. Полякова, Г. А. Арбузова, В. К. Войников, Б. Б. Анапияев // Известия Иркутского государственного университета. Серия Биология. Экология. 2020. Т. 34. С. 20–32. https://doi.org/10.26516/2073-3372.2020.34.20

Гармаш Е. В. Дыхание и вовлечение альтернативного пути в связи с возрастом и фенологической стратегией листа // Физиология растений. 2019. Т. 66, № 3. С. 218–229. https://doi.org/10.1134/S0015330319030047

Митохондриальные энергорассеивающие системы (альтернативная оксидаза, разобщающие белки и «внешняя» NADH-дегидрогеназа) вовлечены в развитие морозоустойчивости проростков озимой пшеницы / О. И. Грабельных, О. А. Боровик, Е. Л. Таусон, Т. П. Побежимова, А. И. Катышев, Н. С. Павловская, Н. А. Королева, И. В. Любушкина, В. Ю. Башмаков, В. Н. Попов, Г. Б. Боровский, В. К. Войников // Биохимия. 2014. Т. 79. С. 645–660. https://doi.org/10.1134/S0006297914060030

Androgenic switch: an example of plant embryogenesis from the male gametophyte perspective / S. F. Maraschin, W. de Priester, H. P. Spaink, M. Wang // J. Exp. Botany. 2005. Vol. 56, N 417. P. 1711–172. https://doi.org/10.1093/jxb/eri190

Androgenesis in Hordeum vulgare L.: effects of mannitol, calcium and abscisic acid on anther pretreatment / S. Hoekstra, S. van Bergen, I. R. van Brouwershaven, R. A. Schilperoort, M. Wang // Plant Sci. 1997. Vol. 126. P. 211–218. https://doi.org/10.1016/S0168-9452(97)00096-4

An improved in vitro technique for isolated microspore culture of barley / K. J. Kasha, E. Simion, R. Oro, Q. A. Yao, T. C. Hu, A. R. Carlson // Euphytica. 2001. Vol. 120. P. 379–385. https://doi.org/10.1023/A:1017564100823

Chromosomal regions associated with the in vitro culture response of wheat (Triticum aestivum L.) microspores / N. H. Nielsen, S. U. Andersen, J. Stougaard, A. Jensen, G. Backes, A. Jahoor // Plant Breed. 2015. Vol. 134. P. 255–263. https://doi.org/10.1111/pbr.12257

Comparison of the androgenic response of spring and winter wheat (Triticum aestivum L.) / D. Weigt, A. Kiel, I. Siatkowski, J. Zyprych-Walczak, A. Tomkowiak, M. Kwiatek // Plants. 2020. Vol. 9, N 1. P. 49. https://doi.org/10.3390/plants9010049

Culture of freshly isolated wheat (Triticum aestivum L.) microspores with inducer chem-icals / M. Y. Zheng, W. Liu, Y. Weng, E. Polle, C. F. Konzak // Plant Cell Rep. 2001. Vol. 20. P. 685–690. https://doi.org/10.1007/s00299-001-0393-0

Effects of light on cyanide-resistant respiration and alternative oxidase function in Ara-bidopsis seedlings / D. W. Zhang, F. Xu, Z. W. Zhang, Y. E. Chen, J. B. Du, S. D. Jia, S. Yu-an, H.-H. Lin // Plant Cell Environ. 2010. Vol. 33. P. 2121–31. https://doi.org/10.1111/j.1365-3040.2010.02211.x

Ethylene synthesis and auxin augmentation in pistil tissues are important for egg cell differentiation after pollination in maize / R. Mòl, M. Filek, I. Machačkova, E. Matthys-Rochon // Plant Cell Physiol. 2004. Vol. 45. P. 1396–1405. https://doi.org/10.1093/pcp/pch167

Genes involved in the dedifferentiation of plant cells / T. Nagata, S. Ishida, S. Hasezawa, Y. Takahashi // Int. J. Dev. Biol. 1994. Vol. 38. P. 321–327.

Horn M. E., Mertz D. Cyanide-resistant respiration in suspension cultured cells of Nico-tiana glutinosa L. // Plant Physiol. 1982. Vol. 69. P. 1439–1443. https://doi.org/ https://doi.org/10.1104/pp.69.6.1439

Islam S. M. S., Tuteja N. Enhancement of androgenesis by abiotic stress and other pre-treatments in major crop species // Plant Sci. 2012. Vol. 182. P. 134–144. https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2011.10.001

Kapulnik Y., Yalpani N., Raskin I. Salicylic acid induce cyanide-resistant respiration in tobacco cell-suspension cultures // Plant Physiol. 1992. Vol. 100. P. 1921–1926. https://doi.org/10.1104/pp.100.4.1921

Lantos C., Jancsó M., Pauk J. Microspore culture of small grain cereals // Acta Physiol. Plant. 2005. Vol. 27. P. 631–639. https://doi.org/10.1007/s11738-005-0067-6

Niroula R. K., Bimb H. P. Overview of wheat X maize system of crosses for dihaploid induction in wheat // World Appl. Sci. J. 2009. Vol. 7, N 8. P. 1037–1045.

Olmedilla A. Microspore embryogenesis // Plant Development Biology – Biotechnologi-cal Perspectives. Heidelberg : Springer-Verlag, 2010. Vol. 2. P. 27–44. https://doi.org/10.1007/978-3-642-04670-4_2

Pauk J., Mihály R., Puolimatka M. Protocol for wheat (Triticum aestivum L.) anther cul-ture // Doubled Haploid Production in Crop Plants. Dordrecht : Springer Science+Business Media B.V., 2003. P. 59–64. https://doi.org/10.1007/978-94-017-1293-4_10

Robson C. A., Vanlerberge G. C. Transgenic plant cells lacking mitochondrial alternative oxidase have increased susceptibility to mitochondria-dependent and -independent pathways of programmed cell death // Plant Physiol. 2002. Vol. 129. P. 1908–1920. https://doi.org/10.1104/pp.004853

Shifting the limits in wheat research and breeding using a fully annotated reference ge-nome / International Wheat Genome Sequencing Consortium (IWGSC) // Science. 2018. Vol. 361. eaar7191. https://doi.org/10.1126/science.aar7191

Stress induced microspore embryogenesis in tobacco: an optimized system for molecular studies / A. Touraev, A. Ilham, O. Vicente, E. Heberle-Bors // Plant Cell Rep. 1996. Vol. 15. P. 561–565. https://doi.org/10.1007/BF00232453

Stress signalling dynamics of the mitochondrial electron transport chain and oxidative phosphorylation system in higher plants / C. Dourmap, S. Roque, A. Morin, D. Caubrière, M. Kerdiles, K. Béguin, R. Perdoux, N. Reynoud, L. Bourdet, P.-A. Audebert, J. Le Moullec, I. Couée // Ann. Bot. 2020. Vol. 125, N 5. P. 721–736. https://doi.org/10.1093/aob/mcz184

The role of alternative oxidase in modulating carbon use efficiency and growth during macronutrient stress in tobacco cells / S. M. Sieger, B. K. Kristensen, C. A. Robson, S. Amirsadeghi, E. W. Y. Eng, A. Abdel-Mesih, I. M. Møller, G. C. Vanlerberghe // J. Exp. Bot. 2005. Vol. 56, N 416. P. 1499–1515. https://doi.org/10.1093/jxb/eri146

The switch of the microspore program in Capsicum involves HSP70 expression and leads to the production of haploid plants / I. Bárány, P. S. Testillano, J. Mitykó, M. C. Risue-no // Int. J. Dev. Biol. 2001. Vol. 45. P. 39–40.

Vanlerberghe G. C. Alternative oxidase: a mitochondrial respiratory pathway to maintain metabolic and signaling homeostasis during abiotic and biotic stress in plants // Int. J. Mol. Sci. 2013. Vol. 14. P. 6805–6847. https://doi.org/10.3390/ijms14046805

Xu F., Yuan S., Lin H.-H. Response of mitochondrial alternative oxidase (AOX) to light signals // Plant Signal. Behav. 2011. Vol. 6, N 1. P. 55–58. https://doi.org/10.4161/psb.6.1.14192