Изучались особенности андрогенеза in vitro в культуре изолированных пыльников озимой пшеницы сорта Иркутская. Исследовано влияние разных питательных сред и условий холодовой предобработки на образование каллусов и эмбриоидов, выявлена оптимальная для индукции андрогенеза среда, определены оптимальные для образования эмбриоидов и зелёных растений-регенерантов температурный режим и длительность холодовой предобработки.

Любушкина Ирина Викторовна, кандидат биологических наук, научный сотрудник, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, Россия, 664033, г. Иркутск, ул. Лермонтова, 132; доцент, Иркутский государственный университет, Россия, 664003, г. Иркутск, ул. К. Маркса, 1, e-mail: ostrov1873@yandex.ru 

Поморцев Анатолий Владимирович, кандидат биологических наук, научный сотрудник, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, Россия, 664033, г. Иркутск, ул. Лермонтова, 132, e-mail: pomorcevanatolii@mail.ru 

Полякова Марина Станиславовна, ведущий инженер, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, Россия, 664033, г. Иркутск, ул. Лермонтова, 132, e-mail: poljakova.m@gmail.com 

Арбузова Галина Андреевна, ведущий инженер, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, Россия, 664033, г. Иркутск, ул. Лермонтова, 132; магистрант, Иркутский государственный университет, Россия, 664003, г. Иркутск, ул. К. Маркса, 1, e-mail: mingronland@mail.ru 

Войников Виктор Кириллович, доктор биологических наук, научный руководитель института, Сибирский институт физиологии и биохимии растений СО РАН, Россия, 664033, г. Иркутск, ул. Лермонтова, 132, e-mail: vvk@sifibr.irk.ru 

Анапияев Бахытжан Бейсенбекович, доктор биологических наук, Казахский национальный исследовательский технический университет им. К. И. Сатпаева, 050013, Казахстан, г. Алматы, ул. Сатпаева, 22а, e-mail: bak_anapiyayev@mail.ru

Влияние инициальных сред и длительности холодовой предобработки на эффективность андрогенеза в культуре изолированных пыльников озимой пшеницы сорта Иркутская / И. В. Любушкина, А. В. Поморцев, М. С. Полякова, Г. А. Арбузова, В. К. Войников, Б. Б. Анапияев // Известия Иркутского государственного университета. Серия Биология. Экология. 2020. Т. 34. С. 20–32. https://doi.org/10.26516/2073-3372.2020.34.20

Анапияев Б. Б. Культура микроспор и гаплоидная биотехнология пшеницы. Алматы, 2001. 220 с. 

Жоносарь М. В. Оптимизация технологии получения удвоенных гаплоидов мягкой пшеницы, различающихся по генам фотопериодической чувствительности (Ppd) и продолжительности яровизации (Vrd) : автореф. дис. … канд. биол. наук. Одесса, 2009. 20 с.

Изучение особенностей андрогенеза в культуре пыльников сортов и перспективной формы яровой мягкой пшеницы западносибирской селекции, различающихся наличием или отсутствием пшенично-чужеродных транслокаций / Л. А. Першина, Т. С. Осадчая, Е. Д. Бадаева, И. А. Белан, Л. П. Россеева // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2013. Т. 17, № 1. С. 40–49. 

Получение высокоморозостойких форм пшенично-пырейных гибридов / Е. П. Размахнин, Т. М. Размахнина, В. Е. Козлов, Е. И. Гордеева, Н. П. Гончаров, Ю. Г. Галицын, С. Г. Вепрев, В. М. Чекуров // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2012. Т. 16, № 1. С. 240–249. 

An improved in vitro technique for isolated microspore culture of barley / K. J. Kasha, E. Simion, R. Oro, Q. A. Yao, T. C. Hu, A. R. Carlson // Euphytica. 2001. Vol. 120. P. 379–385. https://doi.org/10.1023/A:1017564100823

Anther culture effectiveness in producing doubled haploids of cereals / D. Grauda, A. Miķelsone, N. Ļisina, K. Žagata, R. Ornicāns, O. Fokina, L. Lapiņa, I. Rashal // Proc. Latv. Acad. Sci. Sect. B. 2014. Vol. 68. P. 142–147. https://doi.org/10.2478/prolas-2014-0016 

A set of potato media for wheat anther culture / C. C. Chuang, J. W. Ouyang, H. Chia, S. M. Chou, C. K. Ching // Proc. Symp. Plant Tissue Culture. Peking: Sci. Press., 1978. P. 51–56.

Bohanec B. Doubled Haploids via Gynogenesis // Advanced in haploid production in higher plants. Dordrecht : SpringerScience + BusinessMedia B.V., 2009. P. 47–65. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-8854-4_2

Bhojwani S. S., Dantu P. K. Haploid plants // Plant Cell Culture: Essential Methods. N. Y. : John Wiley & Sons, 2010. P. 61–78. https://doi.org/10.1002/9780470686522.ch4

Comparison of the androgenic response of spring and winter wheat (Triticum aestivum L.) / D. Weigt, A. Kiel, I. Siatkowski, J. Zyprych-Walczak, A. Tomkowiak, M. Kwiatek // Plants. 2020. Vol. 9, N 1. P. 49. https://doi.org/10.3390/plants9010049

Gamborg O. L., Eveleigh D. E. Culture methods and detection of glucanases in suspension cultures of wheat and barley // Can. J. Biochem. 1968. Vol. 46, N 5. P. 417–421. https://doi.org/10.1139/o68-063 

Genetics of androgenesis in winter and spring wheat genotypes / H. K. Chaudhary, I. Dhaliwal, S. Singh, G. S. Sethi // Euphytica. 2003. Vol. 132. P. 311–319. https://doi.org/10.1023/A:1025094606482 

Hu T., Kasha K. J. Improvement of isolated microspore culture of wheat (Triticum aestivum L.) through ovary co-culture // Plant Cell Rep. 1997. Vol. 16. P. 520–525. https://doi.org/10.1007/BF01142316 

Islam S. M. S., Tuteja N. Enhancement of androgenesis by abiotic stress and other pretreatments in major crop species // Plant science. 2012. Vol. 182. P. 134–144. https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2011.10.001 

Lantos C., Jancsó M., Pauk J. Microspore culture of small grain cereals // Acta Physiol. Plant. 2005. Vol. 27. P. 631–639. https://doi.org/10.1007/s11738-005-0067-6

Niroula R. K., Bimb H. P. Overview of wheat X maize system of crosses for dihaploid Induction in wheat // WASJ. 2009. Vol. 7, N 8. P. 1037–1045.

Marsolais A. A., Séguin-Swartz G., Kasha K. J. The influence of anther cold pretreatments and donor plant genotypes on in vitro androgenesis in wheat (Triticum aestivum L.) // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1984. Vol. 3. P. 69–79. https://doi.org/10.1007/BF00035922 

Olmedilla A. Microspore embryogenesis // Plant Development Biology – Biotechnological Perspectives. Heidelberg : Springer-Verlag, 2010. Vol. 2. P. 27–44. https://doi.org/10.1007/978-3-642-04670-4_2 

Pauk J., Mihály R., Puolimatka M. Protocol for wheat (Triticum aestivum L.) anther culture // Doubled Haploid Production in Crop Plants. Dordrecht : Springer Science+Business Media, 2003. P. 59–64. https://doi.org/10.1007/978-94-017-1293-4_10 

Progress in doubled haploid technology in higher plants / M. Wedzony, B. P. Forster, I. Żur, E. Golemiec, M. Szechynska-Hebda, E. Dubas, G. Gotębiowska // Advances in haploid Production in Higher Plants. Heidelberg : Springer-Verlag, 2009. P. 1–34. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-8854-4_1 

Regeneration of fertile doubled haploid plants from colchicine-supplemented media in wheat anther culture / I. Zamani, G. Kovacs, E. Gouli-Vavdinoudi, D. G. Roupakias, B. Barnabas // Plant Breed. 2000. Vol. 119. P. 461–465. https://doi.org/10.1046/j.1439-0523.2000.00538.x 

Soriano M., Li H., Boutilier K. Microspore embryogenesis: establishment of embryo identity and pattern in culture // Plant Reprod. 2013. Vol. 26. P. 181–196. https://doi.org/10.1007/s00497-013-0226-7

Stress induced microspore embryogenesis in tobacco: an optimized system for molecular studies / A. Touraev, A. Ilham, O. Vicente, E. Heberle-Bors // Plant Cell Rep. 1996. Vol. 15. P. 561–565. https://doi.org/10.1007/BF00232453