Исследовали уровень активных форм кислорода (АФК) в клетках суспензионной культуры арабидопсиса (Arabidopsis thaliana (L.) Heyn), обработанных ингибиторами различных комплексов дыхательной цепи митохондрий. Показано повышение уровня АФК при ингибировании переноса электронов через комплексы III и IV. В то же время подавление активности комплекса I, напротив, приводило к снижению уровня АФК. Кроме того, уровень АФК был снижен и в клетках мутантной линии арабидопсиса с нарушенным функционированием комплекса I. Таким образом, дисфункция дыхательного комплекса I в растительных митохондриях сопровождается существенным снижением уровня АФК, что принципиальным образом отличает реакцию растительных клеток от таковой животных клеток.

1. Индукция экспрессии гена gdh2 арабидопсисапри изменении редокс-состояния митохондриальной дыхательной цепи / В. И. Тарасенко [и др.] //Биохимия. – 2009. – Т. 74. – С. 62–69.

2. Тарасенко В. И. Характеристика растенийарабидопсиса с инактивированным геном Fe-S-субъединицы комплекса I дыхательной цепи митохондрий / В. И. Тарасенко, Е. Ю. Гарник, Ю. М. Константинов // Физиология растений. – 2010. – Т. 57,№ 3. – С. 415–424.

3. Baker C. J. An improved method for monitoringcell death in cell suspension and leaf disc assays usingevans blue / C. J. Baker, N. M. Mock // Plant. Cell, Tissueand Organ. Culture. – 1994. – Vol. 39. – P. 7–12.

4. Complex I dysfunction redirects cellular and mitochondrialmetabolism in Arabidopsis / M. Garmier [etal.] // Plant. Physiol. – 2008. – Vol. 148. –P. 1324–1341.

5. Differential patterns of reactive oxygen speciesand antioxidative mechanisms during atrazine injuryand sucrose-induced tolerance in Arabidopsis thalianaplantlets / F. Ramel [et al.] // BMC Plant. Biology. –2009. – Vol. 9. – Art. N 28.

6. DiMauro S. Mitochondrial respiratory-chain diseases/ S. DiMauro, E. A. Schon // N. Engl. J. Med. –2003. – Vol. 348. – P. 2656–2668.

7. Eukaryotic complex I: functional diversity andexperimental systems to unravel the assembly process /C. Remacle [et al.] // Mol. Genet. Genomics. – 2008. –Vol. 280. – P. 93–110.

8. Maxwell D. P. The alternative oxidase lowersmitochondrial reactive oxygen production in plant cells /D. P. Maxwell, Y. Wang, L. McIntosh // Proc. Natl.Acad. Sci. USA. – 1999. – Vol. 96. – P. 8271–8276.

9. Meyer E. H. Remodeled respiration in ndufs4with low phosphorylation efficiency suppresses Arabidopsisgermination and growth and alters control of metabolismat night / E. H. Meyer, T. Tomaz, A. J. Carroll// Plant. Physiol. – 2009. – Vol. 151. – P. 603–619.

10. Mitochondrial toxins and neurodegenerativediseases / A. Ayala [et al.] // Front. Biosci. – 2007. –Vol. 12. – P. 986–1007.

11. Moller I. M. Plant mitochondria and oxidativestress: electron transport, NADPH turnover, and metabolismof reactive oxygen species / I. M. Moller //Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. – 2001. –Vol. 52. – P. 561–591.

12. Rasmusson A. G. Alternative NAD(P)H dehydrogenasesof plant mitochondria / A. G. Rasmusson,K. L. Soole, T. E. Elthon // Annu. Rev. Plant. Biol. –2004. – Vol. 55. – P. 23–39.

13. Rhoads D. M. Mitochondrial reactive oxygenspecies. Contribution to oxidative stress and interorganellarsignaling / D. M. Rhoads, A. L. Umbach,C. C. Subbaiah // Plant. Physiol. – 2006. – Vol. 141. –P. 357–366.

14. Zhang Q. Regulation of respiration in rotenone-treated tobacco cell suspension cultures /Q. Zhang, K. L. Soole, J. T. Wiskich // Planta. – 2001. –Vol. 212. – P. 765–773.